2,43
1,65
1,98
0,73
1,88
1,81
2,43
2.2 Các chất chuẩn được sử dụng trong đường cong hiệu chuẩn phân bố khối lượng phân tử tương đối: insulin, mycopeptide, glycine-glycine-tyrosine-arginine, glycine-glycine-glycine
3. Dụng cụ và thiết bị
23.2
21.4
22.2
16.1
22.3
20,8
23,9
27,5
Nhìn chung, tỷ lệ axit amin trong các sản phẩm của Sustar cao hơn so với các sản phẩm của Zinpro.
Phần 8 Tác dụng của việc sử dụng
Ảnh hưởng của các nguồn khoáng chất vi lượng khác nhau đến năng suất và chất lượng trứng của gà mái đẻ trong giai đoạn cuối chu kỳ đẻ trứng.
Quy trình sản xuất
Công nghệ thải độc kim loại có định hướng
Công nghệ nhũ hóa cắt
Công nghệ phun áp lực và sấy khô
Công nghệ làm lạnh và hút ẩm
Công nghệ kiểm soát môi trường tiên tiến
Phụ lục A: Phương pháp xác định sự phân bố khối lượng phân tử tương đối của peptit
Áp dụng tiêu chuẩn: GB/T 22492-2008
Nguyên tắc kiểm tra 1:
Việc này được xác định bằng phương pháp sắc ký lọc gel hiệu năng cao. Cụ thể, sử dụng chất độn xốp làm pha tĩnh, dựa trên sự khác biệt về kích thước khối lượng phân tử tương đối của các thành phần mẫu để tách, phát hiện liên kết peptit ở bước sóng hấp thụ tia cực tím 220nm, sử dụng phần mềm xử lý dữ liệu chuyên dụng để xác định sự phân bố khối lượng phân tử tương đối bằng sắc ký lọc gel (tức là phần mềm GPC), các sắc ký đồ và dữ liệu của chúng được xử lý, tính toán để thu được kích thước khối lượng phân tử tương đối của peptit đậu nành và phạm vi phân bố.
2. Thuốc thử
Nước dùng trong thí nghiệm phải đáp ứng tiêu chuẩn nước thứ cấp theo GB/T6682, các hóa chất sử dụng, trừ trường hợp có quy định đặc biệt, đều phải có độ tinh khiết phân tích.
2.1 Thuốc thử bao gồm acetonitrile (tinh khiết dùng trong sắc ký), axit trifluoroacetic (tinh khiết dùng trong sắc ký),
2.2 Các chất chuẩn được sử dụng trong đường cong hiệu chuẩn phân bố khối lượng phân tử tương đối: insulin, mycopeptide, glycine-glycine-tyrosine-arginine, glycine-glycine-glycine
3. Dụng cụ và thiết bị
3.1 Sắc ký lỏng hiệu năng cao (HPLC): một trạm làm việc hoặc hệ thống tích hợp sắc ký với đầu dò UV và phần mềm xử lý dữ liệu GPC.
3.2 Thiết bị lọc chân không và khử khí pha động.
3.3 Cân điện tử: vạch chia độ 0,000 1g.
4 bước vận hành
4.1 Các điều kiện sắc ký và thí nghiệm điều chỉnh hệ thống (điều kiện tham chiếu)
- 4.1.1 Cột sắc ký: TSKgelG2000swxl300 mm×7,8 mm (đường kính trong) hoặc các cột gel khác cùng loại có hiệu suất tương đương phù hợp để xác định protein và peptide.
- 4.1.2 Pha động: Acetonitrile + nước + axit trifluoroacetic = 20 + 80 + 0,1.
- 4.1.3 Bước sóng phát hiện: 220 nm.
- 4.1.4 Tốc độ dòng chảy: 0,5 mL/phút.
- 4.1.5 Thời gian phát hiện: 30 phút.
- 4.1.6 Thể tích mẫu tiêm: 20μL.
- 4.1.7 Nhiệt độ cột: nhiệt độ phòng.
- 4.1.8 Để hệ thống sắc ký đáp ứng các yêu cầu phát hiện, đã quy định rằng trong các điều kiện sắc ký nêu trên, hiệu suất cột sắc ký gel, tức là số đĩa lý thuyết (N), không được nhỏ hơn 10000 được tính toán dựa trên các đỉnh của chuẩn tripeptide (Glycine-Glycine-Glycine).
- 4.2 Xây dựng đường cong chuẩn khối lượng phân tử tương đối
- Các dung dịch chuẩn peptide có khối lượng phân tử tương đối khác nhau với nồng độ khối lượng 1 mg/mL được chuẩn bị bằng phương pháp phối pha động, trộn theo tỷ lệ nhất định, sau đó lọc qua màng pha hữu cơ có kích thước lỗ 0,2 μm~0,5 μm và tiêm vào mẫu, rồi thu được sắc ký đồ của các chất chuẩn. Đường cong hiệu chuẩn khối lượng phân tử tương đối và phương trình của chúng được thu được bằng cách vẽ đồ thị logarit của khối lượng phân tử tương đối theo thời gian lưu hoặc bằng phương pháp hồi quy tuyến tính.
4.3 Xử lý mẫu
Cân chính xác 10mg mẫu vào bình định mức 10mL, thêm một ít pha động, lắc siêu âm trong 10 phút để mẫu tan hoàn toàn và trộn đều, pha loãng thêm pha động đến vạch, sau đó lọc qua màng pha hữu cơ có kích thước lỗ 0,2μm~0,5μm, và phân tích dịch lọc theo các điều kiện sắc ký trong mục A.4.1.
- 5. Tính toán phân bố khối lượng phân tử tương đối
- Sau khi phân tích dung dịch mẫu được chuẩn bị trong mục 4.3 dưới điều kiện sắc ký của mục 4.1, khối lượng phân tử tương đối của mẫu và phạm vi phân bố của nó có thể thu được bằng cách thay thế dữ liệu sắc ký của mẫu vào đường cong hiệu chuẩn 4.2 bằng phần mềm xử lý dữ liệu GPC. Sự phân bố khối lượng phân tử tương đối của các peptit khác nhau có thể được tính toán bằng phương pháp chuẩn hóa diện tích đỉnh, theo công thức: X = A/A tổng × 100
- Trong công thức: X - Tỷ lệ khối lượng của peptit có khối lượng phân tử tương đối trong tổng số peptit trong mẫu, %;
- A - Diện tích đỉnh của peptit có khối lượng phân tử tương đối;
- Tổng A - tổng diện tích đỉnh của mỗi peptit có khối lượng phân tử tương đối, được tính đến một chữ số thập phân.
- 6. Khả năng lặp lại
- Sai lệch tuyệt đối giữa hai lần xác định độc lập thu được trong điều kiện lặp lại không được vượt quá 15% giá trị trung bình cộng của hai lần xác định đó.
- Phụ lục B: Phương pháp xác định các axit amin tự do
- Áp dụng tiêu chuẩn: Q/320205 KAVN05-2016
- 1.2 Thuốc thử và vật liệu
- Axit axetic băng: tinh khiết về mặt phân tích
- Axit perchloric: 0,0500 mol/L
- Chất chỉ thị: Chất chỉ thị tím tinh thể 0,1% (axit axetic băng)
- 2. Xác định axit amin tự do
Các mẫu được sấy khô ở 80°C trong 1 giờ.
Đặt mẫu vào hộp khô ráo để nguội tự nhiên đến nhiệt độ phòng hoặc làm nguội đến nhiệt độ có thể sử dụng được.Cân khoảng 0,1 g mẫu (chính xác đến 0,001 g) vào bình nón khô 250 mL.Nhanh chóng chuyển sang bước tiếp theo để tránh mẫu hấp thụ độ ẩm từ môi trường xung quanh.Thêm 25 ml axit axetic băng và trộn đều trong không quá 5 phút.Thêm 2 giọt chất chỉ thị tím tinh thể.Chuẩn độ bằng dung dịch chuẩn độ axit perchloric 0,0500 mol/L (±0,001) cho đến khi dung dịch chuyển từ màu tím sang màu cuối.
Ghi lại thể tích dung dịch chuẩn đã sử dụng.
- Tiến hành thử nghiệm đối chứng cùng lúc.
- 3. Tính toán và kết quả
- Hàm lượng axit amin tự do X trong thuốc thử được biểu thị dưới dạng phần trăm khối lượng (%) và được tính theo công thức: X = C × (V1-V0) × 0,1445/M × 100%, trong công thức:
- C - Nồng độ dung dịch axit perchloric chuẩn tính bằng mol trên lít (mol/L)
- V1 - Thể tích dùng để chuẩn độ mẫu bằng dung dịch axit perchloric chuẩn, tính bằng mililit (mL).
- Vo - Thể tích dùng cho mẫu trắng chuẩn độ với dung dịch axit perchloric chuẩn, tính bằng mililit (mL);
M - Khối lượng mẫu, tính bằng gam (g).
| 0,1445: Khối lượng trung bình của các axit amin tương đương với 1,00 mL dung dịch axit perchloric chuẩn [c (HClO4) = 1,000 mol / L]. | 4.2.3 Dung dịch chuẩn độ cerium sulfat: nồng độ c [Ce (SO4) 2] = 0,1 mol/L, được pha chế theo tiêu chuẩn GB/T601. | |
| Áp dụng tiêu chuẩn: Q/70920556 71-2024 | 1. Nguyên tắc xác định (ví dụ như Fe) | Các phức chất sắt của axit amin có độ hòa tan rất thấp trong etanol khan, trong khi các ion kim loại tự do lại hòa tan được trong etanol khan. Sự khác biệt về độ hòa tan giữa hai loại này trong etanol khan được sử dụng để xác định tốc độ tạo phức của các phức chất sắt của axit amin. |
| Trong công thức: V1 - thể tích dung dịch chuẩn cerium sulfate được sử dụng để chuẩn độ dung dịch thử, mL; | Ethanol khan; các điều khoản còn lại giống như điều khoản 4.5.2 trong tiêu chuẩn GB/T 27983-2011. | 3. Các bước phân tích |
| Tiến hành hai thí nghiệm song song. Cân 0,1g mẫu đã sấy khô ở 103±2℃ trong 1 giờ, chính xác đến 0,0001g, thêm 100mL etanol khan để hòa tan, lọc, rửa cặn lọc với 100mL etanol khan ít nhất ba lần, sau đó chuyển cặn vào bình nón 250mL, thêm 10mL dung dịch axit sulfuric theo mục 4.5.3 trong GB/T27983-2011, và sau đó thực hiện các bước tiếp theo theo mục 4.5.3 “Đun nóng để hòa tan rồi để nguội” trong GB/T27983-2011. Tiến hành thí nghiệm đối chứng cùng lúc. | 4. Xác định tổng hàm lượng sắt | 4.1 Nguyên tắc xác định tương tự như điều khoản 4.4.1 trong GB/T 21996-2008. |
4.2. Thuốc thử và dung dịch
| 4.2.1 Axit hỗn hợp: Cho 150mL axit sulfuric và 150mL axit phosphoric vào 700mL nước và trộn đều. | 4.2.2 Dung dịch chỉ thị natri diphenylamin sulfonat: 5g/L, được pha chế theo tiêu chuẩn GB/T603. | 4.2.3 Dung dịch chuẩn độ cerium sulfat: nồng độ c [Ce (SO4) 2] = 0,1 mol/L, được pha chế theo tiêu chuẩn GB/T601. | |
| 4.3 Các bước phân tích | Tiến hành hai thí nghiệm song song. Cân 0,1g mẫu, chính xác đến 0,20001g, cho vào bình nón 250mL, thêm 10mL hỗn hợp axit, sau khi hòa tan, thêm 30ml nước và 4 giọt dung dịch chỉ thị natri dianilin sulfonat, sau đó thực hiện các bước tiếp theo theo mục 4.4.2 trong tiêu chuẩn GB/T21996-2008. Đồng thời tiến hành thí nghiệm đối chứng. | 4.4 Trình bày kết quả | Tổng hàm lượng sắt X1 của phức hợp sắt axit amin theo phần trăm khối lượng sắt, giá trị được biểu thị bằng %, được tính theo công thức (1): |
| X1=(V-V0)×C×M×10-3×100 | V0 - lượng dung dịch chuẩn cerium sulfat được sử dụng để chuẩn độ dung dịch mẫu trắng, mL; | V0 - lượng dung dịch chuẩn cerium sulfat được sử dụng để chuẩn độ dung dịch mẫu trắng, mL; | C - Nồng độ thực tế của dung dịch chuẩn cerium sulfat, mol/L5. Tính toán hàm lượng sắt trong phức chất chelateHàm lượng sắt X2 trong phức chất, tính theo phần trăm khối lượng sắt, được tính theo công thức: x2 = ((V1-V2) × C × 0,05585)/m1 × 100 |
| Trong công thức: V1 - thể tích dung dịch chuẩn cerium sulfate được sử dụng để chuẩn độ dung dịch thử, mL; | V2 - dung dịch chuẩn cerium sulfat được sử dụng để chuẩn độ dung dịch mẫu trắng, mL;nom1 - Khối lượng mẫu, g. Lấy giá trị trung bình cộng của các kết quả xác định song song làm kết quả xác định, và sai khác tuyệt đối giữa các kết quả xác định song song không được vượt quá 0,3%. | 0,05585 - khối lượng sắt(II) biểu thị bằng gam tương đương với 1,00 mL dung dịch chuẩn xeri sulfat C[Ce(SO4)2.4H20] = 1,000 mol/L.nom1 - Khối lượng mẫu, g. Lấy giá trị trung bình cộng của các kết quả xác định song song làm kết quả xác định, và sai khác tuyệt đối giữa các kết quả xác định song song không được vượt quá 0,3%. | 6. Tính toán tốc độ tạo phứcTỷ lệ tạo phức X3, giá trị được biểu thị bằng %, X3 = X2/X1 × 100Phụ lục C: Phương pháp xác định tốc độ tạo phức của Zinpro |
Áp dụng tiêu chuẩn: Q/320205 KAVNO7-2016
1. Thuốc thử và vật liệu
a) Axit axetic băng: tinh khiết phân tích; b) Axit perchloric: 0,0500 mol/L; c) Chất chỉ thị: chất chỉ thị tím tinh thể 0,1% (axit axetic băng)
2. Xác định axit amin tự do
2.1 Các mẫu được sấy khô ở 80°C trong 1 giờ.
2.2 Đặt mẫu vào hộp khô để nguội tự nhiên đến nhiệt độ phòng hoặc làm nguội đến nhiệt độ có thể sử dụng được.
2.3 Cân khoảng 0,1 g mẫu (chính xác đến 0,001 g) vào bình nón khô 250 mL.
2.4 Nhanh chóng chuyển sang bước tiếp theo để tránh mẫu hấp thụ hơi ẩm từ môi trường xung quanh.
2.5 Thêm 25mL axit axetic băng và trộn đều trong không quá 5 phút.
2.6 Thêm 2 giọt chất chỉ thị tím tinh thể.
2.7 Chuẩn độ bằng dung dịch chuẩn độ axit perchloric 0,0500 mol/L (±0,001) cho đến khi dung dịch chuyển từ màu tím sang màu xanh lục trong 15 giây mà không thay đổi màu sắc, đó là điểm kết thúc.
2.8 Ghi lại thể tích dung dịch chuẩn đã sử dụng.
2.9 Tiến hành thử nghiệm đối chứng đồng thời.
- 3. Tính toán và kết quả
- tiếng Catalan
- Physicochemical parameters
V1 - Thể tích dùng để chuẩn độ mẫu bằng dung dịch axit perchloric chuẩn, tính bằng mililit (mL).
Vo - Thể tích dùng cho mẫu trắng chuẩn độ với dung dịch axit perchloric chuẩn, tính bằng mililit (mL);
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Địa chỉ: Số 147 đường Qingpu, thị trấn Shouan, huyện Pujiang, thành phố Thành Đô, tỉnh Tứ Xuyên, Trung Quốc
Số điện thoại: 86-18880477902
Các sản phẩm
Khoáng chất vi lượng vô cơ
- khoáng chất vi lượng hữu cơ
- Tiếng Swahili
- Dịch vụ tùy chỉnh
- Liên kết nhanh
Hồ sơ công ty
| Application object | Suggested dosage (g/t full-value material) | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| tiếng Gujarati | Nhấp vào đây để tìm hiểu thêm | © Bản quyền - 2010-2025: Tất cả các quyền được bảo lưu. | Sơ đồ trang web TÌM KIẾM HÀNG ĐẦU Điện thoại |
| Điện thoại | 86-18880477902 | người Java | E-mail |
| 8618880477902 | Trung Quốc | tiếng Pháp | |
| Bird | Trung Quốc | tiếng Pháp | tiếng Đức tiếng Tây Ban Nha |
| Aquatic animals | Tiếng Nhật | tiếng Hàn | tiếng Ả Rập tiếng Hy Lạp |
| tiếng Thổ Nhĩ Kỳ | Ý | ||
| Ruminant animal g/head day | January 0.75 | Tiếng Indonesia Tiếng Afrikaans Thụy Điển |
Đánh bóng
- Basque
- tiếng Catalan
- Physicochemical parameters
Tiếng Hindi
Lào
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Shona
tiếng Bulgaria
- tiếng Cebuano
- This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
- The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
- tiếng Croatia
Tiếng Hà Lan
| Application object | tiếng Urdu Tiếng Việt | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| tiếng Gujarati | người Haiti | Hausa | Kinyarwanda Người Hmong Tiếng Hungary |
| Piglets and fattening pigs | người Igbo | người Java | Kannada Khmer người Kurd |
| Kyrgyz | tiếng Latinh | ||
| Bird | 300～400 | 45～60 | Macedonia Mã Lai Tiếng Malayalam |
| Aquatic animals | 200～300 | 30～45 | 1. Promote growth, improve feed conversion; 2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality. |
tiếng Na Uy
- tiếng Pashto
- Appearance: brownish-yellow granules
- Physicochemical parameters
tiếng Serbia
Sesotho
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Shona
Sindhi
This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;
Tiếng Swahili
tiếng Tajik
Tiếng Tamil
Tiếng Telugu
Thái Lan
| Application object | tiếng Urdu Tiếng Việt | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Tiếng Yiddish | Tiếng Yoruba | Người Zulu | Kinyarwanda Oriya Người Turkmen |
| người Duy Ngô Nhĩ | 250～400 | 37.5～60 | 1. Improving the immunity of piglets, reducing diarrhea and mortality; 2. Improving palatability, increasing feed intake, increasing growth rate and improving feed conversion; 3. Make the pig coat bright and improve the carcass quality and meat quality. |
| Bird | 300～400 | 45～60 | 1. Improve feather glossiness; 2. improve the laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, and strengthen the coloring ability of egg yolk; 3. Improve anti-stress ability and reduce mortality; 4. Improve feed conversion and increase growth rate. |
| Aquatic animals | January 300 | 45 | 1. Promote growth, improve feed conversion; 2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality. |
| Ruminant animal g/head day | 2.4 | 1. Improve milk yield, prevent mastitis and foof rot, and reduce somatic cell content in milk; 2. Promote growth, improve feed conversion and improve meat quality. |
4. Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
- Product Name: Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
- Appearance: brownish-yellow granules
- Physicochemical parameters
a) Mn: ≥ 10.0%
b) Total amino acids: ≥ 19.5%
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
n=0, 1,2,...indicates chelated manganese for dipeptides, tripeptides, and tetrapeptides
Characteristics of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;
This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
The product can improve the growth rate, improve feed conversion and health status significantly; and improve the laying rate, hatching rate and healthy chick rate of breeding poultry obviously;
Manganese is necessary for bone growth and connective tissue maintenance. It is closely related to many enzymes; and participates in carbohydrate, fat and protein metabolism, reproduction and immune response.
Usage and Efficacy of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
| Application object | Suggested dosage (g/t full-value material) | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Breeding pig | 200～300 | 30～45 | 1. Promote the normal development of sexual organs and improve sperm motility; 2. Improve the reproductive capacity of breeding pigs and reduce reproductive obstacles. |
| Piglets and fattening pigs | 100～250 | 15～37.5 | 1. It is beneficial to improve immune functions, and improve anti-stress ability and disease resistance; 2. Promote growth and improve feed conversion significantly; 3. Improve meat color and quality, and improve lean meat percentage. |
| Bird | 250～350 | 37.5～52.5 | 1. Improve anti-stress ability and reduce mortality; 2. Improve laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, improve eggshell quality and reduce shell breaking rate; 3. Promote bone growth and reduce the incidence of leg diseases. |
| Aquatic animals | 100～200 | 15～30 | 1. Promote growth and improve its anti-stress ability and disease resistance; 2. Improve sperm motility and hatching rate of fertilized eggs. |
| Ruminant animal g/head day | Cattle 1.25 | 1. Prevent fatty acid synthesis disorder and bone tissue damage; 2. Improve reproductive capacity, prevent abortion and postpartum paralysis of female animals, reduce the mortality of calves and lambs, and increase the newborn weight of young animals. | |
| Goat 0.25 |
Part 6 FAB of Small Peptide-mineral Chelates
| S/N | F: Functional attributes | A: Competitive differences | B: Benefits brought by competitive differences to users |
| 1,52 | Selectivity control of raw materials | Select pure plant enzymatic hydrolysis of small peptides | High biological safety, avoiding cannibalism |
| 2 | Directional digestion technology for double protein biological enzyme | High proportion of small molecular peptides | More "targets", which are not easy to saturation, with high biological activity and better stability |
| 3 | Advanced pressure spray & drying technology | Granular product, with uniform particle size, better fluidity, not easy to absorb moisture | Ensure easy to use, more uniform mixing in complete feed |
| Low water content (≤ 5%), which greatly reduces the influence caused by vitamins and enzyme preparations | Improve the stability of feed products | ||
| 4 | Advanced production control technology | Totally enclosed process, high degree of automatic control | Safe and stable quality |
| 5 | Advanced quality control technology | Establish and improve scientific and advanced analytical methods and control means for detecting factors affecting product quality, such as acid-soluble protein, molecular weight distribution, amino acids and chelating rate | Ensure quality, ensure efficiency and improve efficiency |
Part 7 Competitor Comparison
Standard VS Standard
Comparison of peptide distribution and chelation rate of products
| Sustar's products | Proportion of small peptides（180-500） | Zinpro's products | Proportion of small peptides（180-500） |
| AA-Cu | ≥74% | AVAILA-Cu | 78% |
| AA-Fe | ≥48% | AVAILA-Fe | 59% |
| AA-Mn | ≥33% | AVAILA-Mn | 53% |
| AA-Zn | ≥37% | AVAILA-Zn | 56% |
| Sustar's products | Chelation rate | Zinpro's products | Chelation rate |
| AA-Cu | 94.8% | AVAILA-Cu | 94.8% |
| AA-Fe | 95.3% | AVAILA-Fe | 93.5% |
| AA-Mn | 94.6% | AVAILA-Mn | 94.6% |
| AA-Zn | 97.7% | AVAILA-Zn | 90.6% |
The ratio of small peptides of Sustar is slightly lower than that of Zinpro, and the chelation rate of Sustar's products is slightly higher than that of Zinpro's products.
Comparison of the content of 17 amino acids in different products
| Name of amino acids | Sustar's Copper Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA copper | Sustar's Ferrous Amino Acid C helate Feed Grade | Zinpro's AVAILA iron | Sustar's Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA manganese | Sustar's Zinc Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA zinc |
| aspartic acid (%) | 1.88 | 0.72 | 1.50 | 0.56 | 1.78 | 1.47 | 1.80 | 2.09 |
| glutamic acid (%) | 4.08 | 6.03 | 4.23 | 5.52 | 4.22 | 5.01 | 4.35 | 3.19 |
| Serine (%) | 0.86 | 0.41 | 1.08 | 0.19 | 1.05 | 0.91 | 1.03 | 2.81 |
| Histidine (%) | 0.56 | 0.00 | 0.68 | 0.13 | 0.64 | 0.42 | 0.61 | 0.00 |
| Glycine (%) | 1.96 | 4.07 | 1.34 | 2.49 | 1.21 | 0.55 | 1.32 | 2.69 |
| Threonine (%) | 0.81 | 0.00 | 1.16 | 0.00 | 0.88 | 0.59 | 1.24 | 1.11 |
| Arginine (%) | 1.05 | 0.78 | 1.05 | 0.29 | 1.43 | 0.54 | 1.20 | 1.89 |
| Alanine (%) | 2.85 | 1.52 | 2.33 | 0.93 | 2.40 | 1.74 | 2.42 | 1.68 |
| Tyrosinase (%) | 0.45 | 0.29 | 0.47 | 0.28 | 0.58 | 0.65 | 0.60 | 0.66 |
| Cystinol (%) | 0.00 | 0.00 | 0.09 | 0.00 | 0.11 | 0.00 | 0.09 | 0.00 |
| Valine (%) | 1.45 | 1.14 | 1.31 | 0.42 | 1.20 | 1.03 | 1.32 | 2.62 |
| Methionine (%) | 0.35 | 0.27 | 0.72 | 0.65 | 0.67 | 0.43 | January 0.75 | 0.44 |
| Phenylalanine (%) | 0.79 | 0.41 | 0.82 | 0.56 | 0.70 | 1.22 | 0.86 | 1.37 |
| Isoleucine (%) | 0.87 | 0.55 | 0.83 | 0.33 | 0.86 | 0.83 | 0.87 | 1.32 |
| Leucine (%) | 2.16 | 0.90 | 2.00 | 1.43 | 1.84 | 3.29 | 2.19 | 2.20 |
| Lysine (%) | 0.67 | 2.67 | 0.62 | 1.65 | 0.81 | 0.29 | 0.79 | 0.62 |
| Proline (%) | 2.43 | 1.65 | 1.98 | 0.73 | 1.88 | 1.81 | 2.43 | 2.78 |
| Total amino acids (%) | 23.2 | 21.4 | 22.2 | 16.1 | 22.3 | 20.8 | 23.9 | 27.5 |
Overall, the proportion of amino acids in Sustar's products is higher than that in Zinpro's products.
Part 8 Effects of use
Effects of different sources of trace minerals on the production performance and egg quality of laying hens in the late laying period
Production Process
- Targeted chelation technology
- Shear emulsification technology
- Pressure spray & drying technology
- Refrigeration & dehumidification technology
- Advanced environmental control technology
Appendix A: Methods for the Determination of relative molecular mass distribution of peptides
Adoption of standard: GB/T 22492-2008
1 Test Principle:
It was determined by high performance gel filtration chromatography. That is to say, using porous filler as stationary phase, based on the difference in the relative molecular mass size of the sample components for separation, detected at the peptide bond of the ultraviolet absorption wavelength of 220nm, using the dedicated data processing software for the determination of relative molecular mass distribution by gel filtration chromatography (i.e., the GPC software), the chromatograms and their data were processed, calculated to get the size of the relative molecular mass of the soybean peptide and the distribution range.
2. Reagents
The experimental water should meet the specification of secondary water in GB/T6682, the use of reagents, except for special provisions, are analytically pure.
2.1 Reagents include acetonitrile (chromatographically pure), trifluoroacetic acid (chromatographically pure),
2.2 Standard substances used in the calibration curve of relative molecular mass distribution: insulin, mycopeptides, glycine-glycine-tyrosine-arginine, glycine-glycine-glycine
3 Instrument and equipment
3.1 High Performance Liquid Chromatograph (HPLC): a chromatographic workstation or integrator with a UV detector and GPC data processing software.
3.2 Mobile phase vacuum filtration and degassing unit.
3.3 Electronic balance: graduated value 0.000 1g.
4 Operating steps
4.1 Chromatographic conditions and system adaptation experiments (reference conditions)
4.1.1 Chromatographic column: TSKgelG2000swxl300 mm×7.8 mm (inner diameter) or other gel columns of the same type with similar performance suitable for the determination of proteins and peptides.
4.1.2 Mobile phase: Acetonitrile + water + trifluoroacetic acid = 20 + 80 + 0.1.
4.1.3 Detection wavelength: 220 nm.
4.1.4 Flow rate: 0.5 mL/min.
4.1.5 Detection time: 30 min.
4.1.6 Sample injection volume: 20μL.
4.1.7 Column temperature: room temperature.
4.1.8 In order to make the chromatographic system meet the detection requirements, it was stipulated that under the above chromatographic conditions, the gel chromatographic column efficiency, i.e., the theoretical number of plates (N), was not less than 10000 calculated on the basis of the peaks of the tripeptide standard (Glycine-Glycine-Glycine).
4.2 Production of relative molecular mass standard curves
The above different relative molecular mass peptide standard solutions with a mass concentration of 1 mg / mL were prepared by mobile phase matching, mixed in a certain proportion, and then filtered through an organic phase membrane with the pore size of 0.2 μm~0.5 μm and injected into the sample, and then the chromatograms of the standards were obtained. Relative molecular mass calibration curves and their equations were obtained by plotting the logarithm of relative molecular mass against retention time or by linear regression.
4.3 Sample treatment
Accurately weigh 10mg of sample in a 10mL volumetric flask, add a little mobile phase, ultrasonic shaking for 10min, so that the sample is fully dissolved and mixed, diluted with mobile phase to the scale, and then filtered through an organic phase membrane with a pore size of 0.2μm~0.5μm, and the filtrate was analyzed according to the chromatographic conditions in A.4.1.
5. Calculation of relative molecular mass distribution
After analyzing the sample solution prepared in 4.3 under the chromatographic conditions of 4.1, the relative molecular mass of the sample and its distribution range can be obtained by substituting the chromatographic data of the sample into the calibration curve 4.2 with GPC data processing software. The distribution of the relative molecular masses of the different peptides can be calculated by the peak area normalization method, according to the formula: X=A/A total×100
In the formula: X - The mass fraction of a relative molecular mass peptide in the total peptide in the sample, %;
A - Peak area of a relative molecular mass peptide;
Total A - the sum of the peak areas of each relative molecular mass peptide, calculated to one decimal place.
6 Repeatability
The absolute difference between two independent determinations obtained under conditions of repeatability shall not exceed 15% of the arithmetic mean of the two determinations.
Appendix B: Methods for the Determination of Free Amino Acids
Adoption of standard: Q/320205 KAVN05-2016
1.2 Reagents and materials
Glacial acetic acid: analytically pure
Perchloric acid: 0.0500 mol/L
Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)
2. Determination of free amino acids
The samples were dried at 80°C for 1 hour.
Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.
Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask.
Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture
Add 25 mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5 min.
Add 2 drops of crystal violet indicator
Titrate with 0.0500 mol / L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to the end point.
Record the volume of standard solution consumed.
Carry out the blank test at the same time.
3. Calculation and results
The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%) and is calculated according to the formula: X = C × (V1-V0) × 0.1445/M × 100%, in tne formula:
C - Concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)
V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).
Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);
M - Mass of the sample, in grams (g ).
0.1445: Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].
Appendix C: Methods for the Determination of Sustar's chelation rate
Adoption of standards: Q/70920556 71-2024
1. Determination principle (Fe as an example)
Amino acid iron complexes have very low solubility in anhydrous ethanol and free metal ions are soluble in anhydrous ethanol, the difference in solubility between the two in anhydrous ethanol was utilized to determine the chelation rate of amino acid iron complexes.
2. Reagents & Solutions
Anhydrous ethanol; the rest is the same as clause 4.5.2 in GB/T 27983-2011.
3. Steps of analysis
Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of the sample dried at 103±2℃ for 1 hour, accurate to 0.0001g, add 100mL of anhydrous ethanol to dissolve, filter, filter residue washed with 100mL of anhydrous ethanol for at least three times, then transfer the residue into a 250mL conical flask, add 10mL of sulfuric acid solution according to clause 4.5.3 in GB/T27983-2011, and then perform the following steps according to clause 4.5.3 “Heat to dissolve and then let cool” in GB/T27983-2011. Carry out the blank test at the same time.
4. Determination of total iron content
4.1 The principle of determination is the same as clause 4.4.1 in GB/T 21996-2008.
4.2. Reagents & Solutions
4.2.1 Mixed acid: Add 150mL of sulfuric acid and 150mL of phosphoric acid to 700mL of water and mix well.
4.2.2 Sodium diphenylamine sulfonate indicator solution: 5g/L, prepared according to GB/T603.
4.2.3 Cerium sulfate standard titration solution: concentration c [Ce (SO4) 2] = 0.1 mol/L, prepared according to GB/T601.
4.3 Steps of analysis
Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of sample, accurate to 020001g, place in a 250mL conical flask, add 10mL of mixed acid, after dissolution, add 30ml of water and 4 drops of sodium dianiline sulfonate indicator solution, and then perform the following steps according to clause 4.4.2 in GB/T21996-2008. Carry out the blank test at the same time.
4.4 Representation of results
The total iron content X1 of the amino acid iron complexes in terms of mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to formula (1):
X1=(V-V0)×C×M×10-3×100
In the formula: V - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;
V0 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;
C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L
5. Calculation of iron content in chelates
The iron content X2 in the chelate in terms of the mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to the formula: x2 = ((V1-V2) × C × 0.05585)/m1 × 100
In the formula: V1 - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;
V2 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;
C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L;
0.05585 - mass of ferrous iron expressed in grams equivalent to 1.00 mL of cerium sulfate standard solution C[Ce(SO4)2.4H20] = 1.000 mol/L.
m1-Mass of the sample, g. Take the arithmetic mean of the parallel determination results as the determination results, and the absolute difference of the parallel determination results is not more than 0.3%.
6. Calculation of chelation rate
Chelation rate X3, the value expressed in %, X3 = X2/X1 × 100
Appendix C: Methods for the Determination of Zinpro's chelation rate
Adoption of standard: Q/320205 KAVNO7-2016
1. Reagents and materials
a) Glacial acetic acid: analytically pure; b) Perchloric acid: 0.0500mol/L; c) Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)
2. Determination of free amino acids
2.1 The samples were dried at 80°C for 1 hour.
2.2 Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.
2.3 Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask
2.4 Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture.
2.5 Add 25mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5min.
2.6 Add 2 drops of crystal violet indicator.
2.7 Titrate with 0.0500mol/L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to green for 15s without changing color as the end point.
2.8 Record the volume of standard solution consumed.
2.9 Carry out the blank test at the same time.
3. Calculation and results
The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%), calculated according to formula (1): X=C×(V1-V0) ×0.1445/M×100%...... .......(1)
In the formula: C - concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)
V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).
Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);
M - Mass of the sample, in grams (g ).
0.1445 - Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].
4. Calculation of chelation rate
The chelation rate of the sample is expressed as mass fraction (%), calculated according to formula (2): chelation rate = (total amino acid content - free amino acid content)/total amino acid content×100%.
Post time: Sep-17-2025
